用于测量啮齿动物疼痛模型中关节、肌肉、尾巴等部位机械压痛阈值的一种新颖、易于使用的工具。设备可直接量化对动物机械压痛后的动物反应，专为关节疼痛的机械刺激评估而设计并得到验证，适合于关节炎等方面的应用。

关节的慢性衰弱性疼痛与炎症侵袭有关。此前在动物模型中对关节炎疼痛的量化主要采用间接的方法如动物体重分布（双足平衡法）。间接式方法虽然与关节的程度有较好的相关性，但是无法确定疼痛阈值。

Ugo Basile压力应用测试仪可直接量化刺激关节动物的反应，并自动读取阈值大小。操作者只需将特定力传感器佩戴在拇指上，向大鼠或小鼠关节等测试部位施加压力，观察并测量动物反应（通常是四肢缩回）及疼痛阈值。

主机可设置0-500g、0-1500g不同量程范围，测试灵敏度0.1g，适用于各种物种及应用情境。软件能够将实验人员压力施加过程实现可视化观察，提高压力施加的可控性和可重复性。

优势特征：

一、平面探头设计，精确捕捉真实关节阈

在关节炎疼痛研究中，von Frey纤维丝、电子刺痛仪等刺痛方式可能会激浅表皮肤神经末梢的痛觉而非真实深层关节疼痛过敏，PAM平面探头提高关节过敏测试的准确性。按压方式模拟人体关节压痛研究，是动物疼痛测试技术性创新，在药物镇痛和筛选方面应用广。

二、可设置自动、手动记录方式，存储容量大

对测试部位进行按压时，一旦动物出现缩足反应，测试结束，电子控制器实时记录测试结果并保存，存储容量可达上千个。PAM的另一个独特设计为实时手动记录踏板，在特定情况需要手动记录时，研究者可自行踩下踏板结束测试，并保存数据。

三、可设定施力斜率，施力曲线可直观比较

斜率当力以线性增加稳定情况，将恒定的斜率视为参考值，用户在施力时可尝试匹配设定施力斜率，可提高实验结果准确度。多个测试结束后，软件可形成力随时间变化的曲线图，可将数据保存为Excle格式，再由市面上大多数可用的统计分析软件进行分析。

四、拓展性强，应用范围广。

PAM可进行其他动物如兔子、豚鼠等动物进行关节测试。选配鼠爪压力器，可将PAM快速转化为Randall-Selitto压痛法，测试各类动物的爪子、尾巴、肌肉疼痛情况。

软件测试：

应用领域：

压力应用测试仪已用于多物种的关节、肌肉、尾巴等部位的损伤和炎症模型中，如风湿病、外周动脉疾病、肌肉痛、神经病变、运动功能障碍，可帮助进行疼痛分子研究和异常性疼痛、痛觉过敏的药物筛选。

型号规格：

参考文献：

1.Mlost J, Kac P, Kędziora M, Starowicz K. Antinociceptive and chondroprotective effects of prolonged β-caryophyllene treatment in the animal model of osteoarthritis: Focus on tolerance development. Neuropharmacology. 2022;204:108908. doi:10.1016/j.neuropharm.2021.108908

2.Ishihara S, Obeidat AM, Wokosin DL, et al. The role of intra-articular neuronal CCR2 receptors in knee joint pain associated with experimental osteoarthritis in mice. Arthritis Res Ther. 2021;23(1):103. Published 2021 Apr 7. doi:10.1186/s13075-021-02486-y

3.Zaki S, Smith MM, Little CB. Pathology-pain relationships in different osteoarthritis animal model phenotypes: it matters what you measure, when you measure, and how you got there. Osteoarthritis Cartilage. 2021;29(10):1448-1461. doi:10.1016/j.joca.2021.03.023

4.Tschon M, Salamanna F, Martini L, et al. Boosting the Intra-Articular Efficacy of Low Dose Corticosteroid through a Biopolymeric Matrix: An In Vivo Model of Osteoarthritis. Cells. 2020;9(7):1571. Published 2020 Jun 28. doi:10.3390/cells9071571

5.Paniagua N, Sánchez-Robles EM, Bagues A, Martín-Fontelles MI, Goicoechea C, Girón R. Behavior and electrophysiology studies of the peripheral neuropathy induced by individual and co-administration of paclitaxel and oxaliplatin in rat. Life Sci. 2021;277:119397. doi:10.1016/j.lfs.2021.119397

6.Carmon I, Zecharyahu L, Elayyan J, et al. HU308 Mitigates Osteoarthritis by Stimulating Sox9-Related Networks of Carbohydrate Metabolism. J Bone Miner Res. 2023;38(1):154-170. doi:10.1002/jbmr.4741

7.Phie J, Krishna SM, Kinobe R, et al. Effects of quercetin on exercise performance, physical activity and blood supply in a novel model of sustained hind-limb ischaemia. BJS Open. 2021;5(1):zraa059. doi:10.1093/bjsopen/zraa059

8.Krishna SM, Omer SM, Li J, Morton SK, Jose RJ, Golledge J. Development of a two-stage limb ischemia model to better simulate human peripheral artery disease. Sci Rep. 2020;10(1):3449. Published 2020 Feb 26. doi:10.1038/s41598-020-60352-4

9.Gao W, Shen L, Long DD, et al. Angiotensin II type 2 receptor pharmacological agonist, C21, reduces the inflammation and pain hypersensitivity in mice with joint inflammatory pain. Int Immunopharmacol. 2022;110:108921. doi:10.1016/j.intimp.2022.108921

Leuchtweis J, Segond von Banchet G, Eitner A, Ebbinghaus M, Schaible HG. Pain-related behaviors associated with persistence of mechanical hyperalgesia after antigen-induced arthritis in rats. Pain. 2020;161(7):1571-1583. doi:10.1097/j.pain.0000000000001852